辅酶脂质体论文-杨硕晔,王乐,刘娜,王贯宇,潘梦宇

2020-04-13782 views

导读:本文包含了辅酶脂质体论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献,主要关键词:辅酶Q10,长循环脂质体,冻干制剂,鱼精蛋白沉淀法

辅酶脂质体论文文献综述

杨硕晔,王乐,刘娜,王贯宇,潘梦宇[1](2016)在《辅酶Q10长循环脂质体及冻干制剂的制备与质量控制》一文中研究指出目的:制备辅酶Q10长循环脂质体,建立含量与包封率测定方法,并将其制成冻干制剂以提高稳定性。方法:以薄膜分散质体与游离药物,计算包封率。将辅酶Q10长循环脂质体制成冻干制剂,检测其冻干0、30、90 d后药物含量与包封率变化。结果:所制备的辅酶Q10长循环脂质体大小均匀,粒径约为(166.0±5.3)nm,Zeta电位约为(-22.2±1.4)m V,3批样品中辅酶Q10的平均含量(占标示量的百分含量)为98.2%(RSD=2.8%),平均包封率为93.2%(RSD=4.6%);与冻干0 d比较,冻干90 d后辅酶Q10长循环脂质体冻干制剂的含量与包封率无明显变化。结论:成功制得含量和包封率均较高的辅酶Q10长循环脂质体和能冻干保存90 d的冻干制剂。(本文来源于《中国药房》期刊2016年22期)

隋小宇,董晓泽,韩翠艳,袁橙,刘畅[2](2015)在《辅酶Q_(10)前体脂质体的制备及其质量评价》一文中研究指出采用高压均质结合冷冻干燥法制备辅酶Q10前体脂质体,并通过正交实验设计对处方及工艺进行优化。经红外光谱、X射线衍射等手段对优化后的产品质量进行分析,同时,对其稳定性进行评价。结果显示本研究制备的辅酶Q10前体脂质体经重建后的平均粒径为241 nm,包封率67.31%,贮存90 d后质量无明显变化。本实验制备的前体脂质体,质量可靠,稳定性好,工艺便捷,适于工业生产及食品中应用。(本文来源于《食品工业科技》期刊2015年21期)

赵国栋,夏强[3](2014)在《辅酶Q10硫辛酸复配脂质体的制备与表征》一文中研究指出目的制备一种负载辅酶Q10和硫辛酸的复配脂质体,考察其物理化学性质。方法选择大豆卵磷脂、胆固醇作为油相,聚山梨酯80作为表面活性剂,采用乙醇注入法制备脂质体并通过正交实验优化配方。结果按照优化方案制备的脂质体辅酶Q10包封率97.03%,硫辛酸包封率88.92%,平均粒径183.4 nm,多分散指数(PDI)小于0.28,Zeta电位-6.9mV,透射电镜下呈球形,粒径大小与光子相关谱(PCS)结果一致。该脂质体具有良好的离心、冻融、静止稳定性,pH与人体皮肤表面pH相似,通过脂质体包裹,辅酶Q10和硫辛酸的稳定性明显提升,且其体外释放速率大大减慢。结论该脂质体制备方法简单,包封率高,粒径较小,具有良好的物理稳定性和应用前景。(本文来源于《食品与药品》期刊2014年03期)

程晓波,邹佳,王春玲,王宇,杨强[4](2013)在《不同粒径辅酶Q_(10)乳剂和脂质体小鼠药物动力学和组织分布》一文中研究指出目的研究不同粒径辅酶Q10乳剂和脂质体小鼠药物动力学和组织分布。方法以市售辅酶Q10注射液(S)为对照,考察其60 nm乳剂(E60)、120 nm乳剂(E120)、60 nm脂质体(L60)和120nm脂质体(L120)小鼠尾静脉给药后的药物动力学及组织分布特征;采用DAS2.1.1药物动力学软件,进行房室模型和统计矩两种模式拟合;以组织相对摄取率(re)为指标,评价载体的粒径和种类对组织靶向性的影响。结果不同粒径辅酶Q10乳剂和脂质体体内分布均符合双隔室模型;E60、E120、L60和L120的统计矩AUC分别是S组的1.17、1.50、5.99和8.65倍;re结果显示,E60组在心、脾和脑的含量分别是S组的2.64、2.74和1.95倍,E120组在心、脾和脑的含量分别是S组的4.89、3.77和2.38倍;L60组在脑中的含量是S组的1.56倍,L120组在脑和肺的含量分布是S组的2.28和1.85倍。结论载体粒径和种类对辅酶Q10体内分布的影响十分明显,市售注射液组、乳剂组和脂质体组的AUC依次增大,且同一载体中,120 nm组较60 nm组的AUC高;相对市售注射液,乳剂组对心、脾和脑有一定的靶向性,而脂质体组主要靶向于脑和肺,同一载体内,120 nm组在多数组织的富集量多于60 nm组。(本文来源于《沈阳药科大学学报》期刊2013年08期)

张婧,李翔,王思玲,廖正根,韩锡镇[5](2013)在《辅酶Q_(10)膜修饰脂质体的制备及其抗上皮细胞SRA 01/04凋亡作用研究》一文中研究指出目的:制备辅酶Q10(Coenzyme Q10)膜修饰脂质体,并对其体外抗人晶状体上皮细胞(HLECs)SRA 01/04凋亡作用进行研究。方法:采用自制N-叁甲基壳聚糖(TMC)为膜修饰材料,乙醇注入法制备TMC修饰辅酶Q10脂质体(TMC-CoQ10-LP),以药物包封率为指标,磷脂用量(A)、磷脂与胆固醇质量比(B)、磷脂与药物质量比(C)及制备温度(D)为考察因素,采用正交设计优化处方;考察优化处方制得制剂的理化性质;将对数生长期的HLECsSRA 01/04随机分为对照组,模型组,低(38μmol/L)、高(76μmol/L)浓度CoQ10给药组,采用MTT法考察制剂对细胞的抗凋亡作用。结果:最优处方为A2%,B4∶1,C10∶1,D50℃;脂质体呈球形或近球形,粒径呈双峰分布,Zeta电位为24.5mV,包封率可达98%;与模型组比较,低、高浓度CoQ10给药组细胞活力分别提高(20.1±6.47)%、(60.6±18.4)%,细胞凋亡率分别降为23.67%、18.35%。结论:本脂质体制备方法简便、处方重现性好、包封率稳定;与低浓度制剂比较,高浓度制剂的抗凋亡作用更为明显。(本文来源于《中国药房》期刊2013年17期)

邹佳,于彬,宋阳,张玲,王范[6](2010)在《粒径和质量浓度对辅酶Q_(10)脂质体光解动力学的影响》一文中研究指出目的为辅酶Q10脂质体的进一步研究提供参考。方法制备不同粒径和不同质量浓度的辅酶Q10脂质体,进行光照加速试验,考察脂质体中辅酶Q10的光解规律。结果辅酶Q10脂质体的光解符合一级降解动力学。平均粒径为309.4、125.9、64.8 nm的1.0 g.L-1辅酶Q10脂质体的光解半衰期分别为55.4、45.3、34.3 h;药物质量浓度为1.0、0.5、0.1 g.L-1辅酶Q10脂质体(309.4 nm)的光解半衰期分别为55.4、31.1、19.3 h。结论辅酶Q10脂质体的光解具有一定的粒径和质量浓度依赖性,粒径越大,起始质量浓度越高,光解半衰期越长,光保护效果越明显。(本文来源于《沈阳药科大学学报》期刊2010年01期)

祝青哲[7](2008)在《辅酶Q_(10)纳米脂质体的应用及辅酶Q_(10)前体脂质体的研究》一文中研究指出辅酶Q10是生物体内广泛存在的脂溶性醌类化合物,对缓解体力疲劳、抗氧化、提高机体免疫力有着特殊意义。以脂质体作为输送系统是改善辅酶Q10等亲脂性营养物的水溶性并提高其口服生物利用度的有效途径,可作为营养强化剂添加到运动饮料中,充分发挥其生物效应。采用冷冻干燥法制备的辅酶Q10前体脂质体能进一步提高辅酶Q10脂质体的长期贮存稳定性。本论文研究了辅酶Q10纳米脂质体强化运动饮料的稳定性并选择合适的超高压杀菌条件;采用动物试验评价其抗疲劳效果;并进一步研究了辅酶Q10前体脂质体的冷冻干燥工艺、冻干保护剂、配方及贮存稳定性。研究辅酶Q10纳米脂质体强化运动饮料的稳定性并优化超高压杀菌条件。通过响应面分析确定在温度为20~25℃时超高压杀菌的最优工艺参数为:压力394 MPa,保压时间8.44 min。高压处理后该饮料中菌落总数低于10 cfu/mL,其中辅酶Q10纳米脂质体平均粒径仍可维持在100 nm以下,包封率在90%以上,4℃贮存6个月后辅酶Q10的保留率可维持在90%以上。通过动物试验评价辅酶Q10纳米脂质体强化运动饮料的抗疲劳作用,同时研究了采用纳米脂质体作为载体输送的辅酶Q10在小鼠血浆、肝脏和心脏组织中的分布。该运动饮料能延长小鼠负重游泳时间,维持游泳小鼠肝糖原水平,抑制蛋白质分解,降低血清中血乳酸含量,并显着提高血清中超氧化物歧化酶活力(P<0.05),降低血清中丙二醛含量(P<0.05),从而延缓疲劳的产生或有助于运动后疲劳的消除。以纳米脂质体为输送系统具有肝脏被动靶向性,有效提高了辅酶Q10在小鼠肝脏中的蓄积量(5.56±0.90μg/g,P<0.05)。为提高辅酶Q10脂质体的长期贮存稳定性,采用冷冻干燥法成功研制了具有良好复水特性的辅酶Q10前体脂质体。对其冻干工艺进行了优化,确定冻干最优工艺为:-70℃快速预冻,保持24h;冷冻干燥参数为-30℃22h,-10℃10h,-4℃5h,25℃3h,(升温速率1.5℃/min)。初步选择蔗糖、海藻糖、甘露醇、乳糖等作为冻干保护剂,比较冻干后辅酶Q10前体脂质体的形态及复水后形成的辅酶Q10脂质体的平均粒径和包封率。确定最优保护剂为海藻糖,浓度为20%(w/v),与卵磷脂质量比为4︰1。确定用于冻干的辅酶Q10脂质体配方为辅酶Q10/蛋黄磷脂/胆固醇/吐温80=0.47︰2.5︰0.4︰1.8(w/w),水化介质为磷酸盐缓冲液(pH 7.4,0.01 mol/L)。采用冷冻干燥法制得的辅酶Q10前体脂质体呈淡黄色均匀饼状,水分散性好,于室温干燥条件贮存6个月,复水后得到的辅酶Q10脂质体包封率达85%以上,平均粒径为255 nm,且在复水后24 h内稳定。红外光谱分析表明海藻糖与磷脂P=O基团之间形成较强的氢键作用,初步认为保护剂的作用机制与“水代替假说”相符。(本文来源于《江南大学》期刊2008-03-01)

祝青哲,夏书芹,许时婴[8](2008)在《辅酶Q_(10)前体脂质体的研制及其特性研究》一文中研究指出为提高辅酶Q10脂质体的稳定性,采用冷冻干燥法制备辅酶Q10前体脂质体。选择蔗糖、海藻糖、甘露醇、乳糖等作冻干保护剂,研究复水前后辅酶Q10脂质体的形态、粒径分布和包封率,并研究了辅酶Q10前体脂质体红外光谱性质,比较冷冻干燥保护剂种类及用量对辅酶Q10脂质体的保护作用。优选保护剂为海藻糖,与卵磷脂质量比为4∶1,辅酶Q10前体脂质体水合重建后平均粒径为508nm,包封率达75%。红外光谱分析表明海藻糖与磷脂P=O基团之间形成氢键作用最强。(本文来源于《食品工业科技》期刊2008年01期)

朱斌,许时婴,夏书芹[9](2006)在《薄膜水化法制备辅酶Q_(10)脂质体》一文中研究指出辅酶Q10是一种人体内不可缺少的参与代谢的营养物,由于其是脂溶性的,生物利用率很低。文中以卵磷脂为主要壁材,采用薄膜水化法制得稳定性较好的辅酶Q10脂质体,可以改善其水溶性,提高生物利用率。研究了胆固醇、聚乙二醇(PEG)、水化温度和pH对脂质体包封辅酶Q10效果的影响。贮藏试验表明较佳的贮藏条件为4℃避光,脂质体双分子层对辅酶Q10有明显的保护作用,而且辅酶Q10也有效抑制了磷脂的氧化,并能稳定脂质体双分子层。(本文来源于《食品与机械》期刊2006年06期)

李喆,邓英杰,杨静文,李宝齐,张修宇[10](2006)在《辅酶Q_(10)脂质体在小鼠体内药物动力学和组织分布》一文中研究指出目的考察辅酶Q10脂质体静脉给药后在小鼠体内的药代动力学和组织分布。方法采用乙醇注入法制备辅酶Q10脂质体,静脉注射给药后,HPLC法测定小鼠血浆和组织中辅酶Q10浓度变化。结果辅酶Q10脂质体的t1/2和AUC均为溶液剂的1.54倍,辅酶Q10脂质体在心、脾、肺中分布增加,尤以心中增加明显。结论辅酶Q10脂质体延缓了药物释放,提高了生物利用度,增强了靶向性作用。(本文来源于《中国药剂学杂志(网络版)》期刊2006年04期)

辅酶脂质体论文开题报告

(1)论文研究背景及目的

此处内容要求:

首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景,再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题,并提出你的论文准备的观点或解决方法。

写法范例:

采用高压均质结合冷冻干燥法制备辅酶Q10前体脂质体,并通过正交实验设计对处方及工艺进行优化。经红外光谱、X射线衍射等手段对优化后的产品质量进行分析,同时,对其稳定性进行评价。结果显示本研究制备的辅酶Q10前体脂质体经重建后的平均粒径为241 nm,包封率67.31%,贮存90 d后质量无明显变化。本实验制备的前体脂质体,质量可靠,稳定性好,工艺便捷,适于工业生产及食品中应用。

(2)本文研究方法

调查法:该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。

观察法:用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。

实验法:通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。

文献研究法:通过调查文献来获得资料,从而全面的、正确的了解掌握研究方法。

实证研究法:依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。

定性分析法:对研究对象进行“质”的方面的研究,这个方法需要计算的数据较少。

定量分析法:通过具体的数字,使人们对研究对象的认识进一步精确化。

跨学科研究法:运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。

功能分析法:这是社会科学用来分析社会现象的一种方法,从某一功能出发研究多个方面的影响。

模拟法:通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。

辅酶脂质体论文参考文献

[1].杨硕晔,王乐,刘娜,王贯宇,潘梦宇.辅酶Q10长循环脂质体及冻干制剂的制备与质量控制[J].中国药房.2016

[2].隋小宇,董晓泽,韩翠艳,袁橙,刘畅.辅酶Q_(10)前体脂质体的制备及其质量评价[J].食品工业科技.2015

[3].赵国栋,夏强.辅酶Q10硫辛酸复配脂质体的制备与表征[J].食品与药品.2014

[4].程晓波,邹佳,王春玲,王宇,杨强.不同粒径辅酶Q_(10)乳剂和脂质体小鼠药物动力学和组织分布[J].沈阳药科大学学报.2013

[5].张婧,李翔,王思玲,廖正根,韩锡镇.辅酶Q_(10)膜修饰脂质体的制备及其抗上皮细胞SRA01/04凋亡作用研究[J].中国药房.2013

[6].邹佳,于彬,宋阳,张玲,王范.粒径和质量浓度对辅酶Q_(10)脂质体光解动力学的影响[J].沈阳药科大学学报.2010

[7].祝青哲.辅酶Q_(10)纳米脂质体的应用及辅酶Q_(10)前体脂质体的研究[D].江南大学.2008

[8].祝青哲,夏书芹,许时婴.辅酶Q_(10)前体脂质体的研制及其特性研究[J].食品工业科技.2008

[9].朱斌,许时婴,夏书芹.薄膜水化法制备辅酶Q_(10)脂质体[J].食品与机械.2006

[10].李喆,邓英杰,杨静文,李宝齐,张修宇.辅酶Q_(10)脂质体在小鼠体内药物动力学和组织分布[J].中国药剂学杂志(网络版).2006

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